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如何用流式细胞仪分选T细胞

嘉峪检测网        2024-11-14 08:41

一、实验原理

 

流式细胞术(Flow Cytometry, FCM)是一种单细胞定量分析技术,该技术通过测定库尔特电阻、荧光、光散射和光吸收等参数,可以定量分析细胞的结构特征(如DNA含量、蛋白、细胞膜、胞浆或胞核抗原表达量)和功能特征(如细胞内酶活性、钙流变化等)等多种重要参数,进行细胞特征分析与分选。它的核心功能是将混合物中的不同细胞分离并计数,将感兴趣的细胞分选出来,提供分类比例并进行进一步分析。

 

 

二、实验步骤

 

(一)样本制备

 

1.取样: 取100μL抗凝血。

 

2.标记:根据抗体说明书标记实验管。混匀后,室温避光孵育15分钟。

 

3. 溶血:将10×裂红液用水稀释10倍,每管加入1mL,振荡器混匀后室温避光静置10分钟,300g,4°C离心5分钟。

 

4. 洗涤:弃去上清,加入1mL 1×PBS洗液,300g离心洗涤5分钟,洗2-3次。

 

5. 上机检测:弃去上清后加入500μL 1×PBS,混匀悬浮后过滤,避光等待上机检测。

 

(二)仪器操作

 

1. 打开流式细胞仪、开启液流、质控。

 

2. 分选前设置:共包含两个步骤,第一,调节合适的液流断点,待四路窗口形成清晰的5路液流,其中含4个收集液流,一个废液流后,利用“sweetspot”锁住此断点;然后利用Accudrop 珠子,调整 “Drop Delay”时间,当左侧液流接近 100%,而且保持相对稳定的范围的时间是最佳时间。

 

3. 设置分析条件:完成质控后,建立用户文件夹、当日实验文件夹,根据细胞标记,选择所需参数,根据各抗原之间生物关系及实验主要关注点,画好 FSC-SSC及各荧光参数两两相对的散点图,根据抗原生物关系设置分析门,及群级联关系表。

 

4. 确定电压:先上对照管,根据淋巴细胞在 FSC-SSC散点图中的位置,调整 FSC和SSC两个参数的电压,保证淋巴、单核及中心粒细胞呈现在合适的位置,然后设置P1 门圈住淋巴细胞;根据阴性细胞群位置,调整好其它荧光参数的电压,记录10000个细胞。

 

 

5. 分类计数:上阳性管,通过分级设门,完成各抗原之间生物关系的呈现,及各细胞分类计数情况。

 

6. 分选设置:在“sort layout”窗口,设置收集装置和纯度模式,然后设置分选门,圈住CD4或CD8 阳性的细胞,将分选门分别填入左右“sort location field” 框中。

 

7. 分选:将收集管中分别装200ul 1XPBS,放入仪器分选仓下面的收集管架上:点“sort”开始分选,此时“sort location field”框中可见所获得的CD4或CD8阳性的细胞数目;收集到足够的目的细胞后,停止分选。

 

8.细胞纯度检测:利用上样针清洗液和水清洗上样针,直到以水上样时,FSC-SSC散点图中“无点”为止。将分选获得的CD4阳性细胞上样回测,观察细胞分选纯度;再次清洗上样针,将分选获得CD8阳性细胞上样回测,观察细胞分选纯度。

 

三、实验结果

 

通过上述步骤,我们可以成功分选并收集到特定的T细胞群体。

 

 

 

分类结果分析:外周血CD8+T细胞在T淋巴细胞中占比:46.7%,外周血CD4+T细胞在T淋巴细胞中占比:36.3%。

 

 

分选细胞纯度分析:外周血CD8+T细胞在T淋巴细胞中占比:98.3%,不含外周血CD4+T细胞,表明分选成功。

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来源:实验老司机