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小鼠脑立体定位注射实验步骤与注意事项

嘉峪检测网        2025-03-25 08:10

1. 实验原理

 

脑立体定位注射是基于三维立体坐标系统(X,Y,Z轴),通过颅骨上的解剖学标志(如前囟、后囟、颅缝等)确定大脑内部目标区域的精确位,将药物、病毒载体或其他物质注入大脑特定区域的技术,目前已广泛应用于神经科学研究和临床治疗。

 

2. 实验材料

 

耗材:玻璃微电极、1 mL注射器、棉签

试剂:病毒(通常-80℃液氮冻存,避免反复冻融;比需要注射的体积多300 nL左右)、生理盐水(0.9% NaCl溶液)、3M组织胶

设备:玻璃微电极拉制仪、脑立体定位仪、注射泵和它相应的控制器、加热垫

 

3. 实验步骤

 

吸取病毒→固定小鼠→定位调平→钻孔开颅→注射病毒→留针→术后处理

 

3.1 吸取病毒

 

用微电极拉制仪上设定好的程序拉制玻璃微管,将玻璃微电极的尖端剪短,并用石蜡油填充满直至溢出;

将它装在注射泵上,控制器控制泵打出少许(200 nL)体积的石蜡油以判别气密性是否完好;

若石蜡油可以打出表示气密性完好,之后用含有生理盐水的注射器清洗玻璃微电极的针尖,然后吸取病毒(速度50-80 nL/min)。

 

3.2 固定小鼠

 

将麻醉好的小鼠固定在脑立体定位仪上,先将小鼠前门齿卡入适配器的孔再将上方旋钮拧紧;

 

用耳杆穿过小鼠的耳朵寻找合适的卡点,注意耳杆的距离等长,也不要用蛮力,不然小鼠会被夹死。

 

3.3 定位调平

 

剪开小鼠的头皮,寻找bregma点即冠状缝与矢状缝的交汇点,以及lambda点即人字缝与矢状缝的交汇点,定位两点在同一高度即可(一般不会超过0.05 mm);

 

左右调平,判别bregma点之后1.8 mm左右旁开1.5 mm的两个点的高度是否一致(一般不会超过0.05 mm),若不一致,调节左右的升降旋钮进行调节。

3.4 钻孔开颅

 

调平之后,用玻璃微电极的尖端与bregma点调齐定义零点;

 

然后调节定位仪定位目标脑区,例如NAc(AP:1.4 mm;mL:±1.2 mm;DV:4.2 mm),用注射器尖端标记一下颅骨上的位置,用无菌骨钻(参考转数10000rpm)缓慢打磨颅骨钻孔(避免电钻钻到脑)。

 

3.5 注射病毒

 

玻璃微电极缓慢下降看针尖能否落到钻的小孔中,若能,在针尖接触到脑膜的时候定义深度的零点;

 

然后缓慢下降(0.02 mm/s)到目标脑区深度(例如NAc,4.2 mm),用注射泵的控制器注射病毒(一般体积在300-500 nL,速度一般在30-50 nL/min)。

 

3.6 留针

 

待病毒注射完后,静置5-10 min即可出针;

 

清理颅骨上的杂质,缝合头皮,在缝合处点上组织胶(利于小鼠恢复),之后取下小鼠将其放在加热垫上等待其苏醒。

 

3.7 术后处理

 

显微镜下检查缝合情况;

 

脑部组织回位:轻柔按压周围组织消除气隙;

 

苏醒监测:记录恢复时间(正常范围5-15 min)。

 

4. 注意事项

 

玻璃微电极尖端的长度注意控制,太长吸取病毒或打出病毒的时候容易堵塞,太短的话无法伸到目标脑区;

注射病毒前观察病毒是否能打出来,避免耽误时间;

 

注射病毒的时候注意观察病毒是否从脑沿针尖溢出。

 

5. 参考资料

 

[1] Dudek KA, Paton SEJ, Binder LB, et al. Astrocytic cannabinoid receptor 1 promotes resilience by dampening stress-induced blood-brain barrier alterations. Nat Neurosci.

 

[2] Zhou K, Xu H, Lu S, et al. Reward and aversion processing by input-defined parallel nucleus accumbens circuits in mice. Nat Commun. 2022;13(1):6244.

 

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来源:实验老司机